ARTÍCULOS PUDRICIÓN NEGRA BASAL CAUSADA POR FUSARIUM OXYSPORUM EN PARDILLO NEGRO (CORDIA THAISIANA) Luis Cedeño 1 y Osmary Araque 2 Universidad de Los Andes, Instituto de Investigaciones Agropecuarias, 1 Laboratorio de Fitopatología, 2 Ecofisiología de cultivos, Santa Rosa, Mérida, Venezuela. E-mail: cedenol@ula.ve. Recibido: 01 de febrero de 2010. Aceptado: 28 de mayo de 2010. RESUMEN Cedeño, L. y Araque, O. 2010. Pudrición negra basal causada por Fusarium oxysporum en pardillo negro (Cordia thaisiana). Fitopatol. Venez. 23:2-4. Por primera vez se reporta, formalmente, a Fusarium oxysporum como agente causal de pudrición negra basal en pardillo negro. Los árboles enfermos primeramente se marchitan y posteriormente mueren súbitamente a causa de la invasión y descomposición de raíces y los tejidos que conforman la porción inferior del tronco. Considerando la severidad del ataque y lo difícil que resulta controlar eficientemente las especies de Fusarium, se puede presumir que la enfermedad investigada pudiera convertirse en un importante factor limitante para empleo del pardillo negro como árbol de sombra en plantaciones de cacao. ABSTRACT Cedeño, L. and Araque, O. 2010. Basal black rot disease caused by Fusarium oxysporum on pardillo negro (Cordia thalsiana). Fitopatol. Venez. 23:2-4. For first time the fungus Fusarium oxysporum is formally reported causing a basal black rot disease on Cordia thaisiana. At first the trees become wilted and later them die suddenly due to the fungus invades roots and the trunk lower portion. Considering the severity of attack and hard to control efficiently Fusarium’s species, it is possible to presume that the investigated disease could turn into one important limiting factor for employing black pardillo as shade tree into cacao plantations. INTRODUCCIÓN El pardillo negro (Cordia thaisiana Agostini) es una especie arbórea nativa de la región colombo-venezolana (9), la cual se encuentra distribuida desde Venezuela y las Antillas hasta el sureste de México (6). Tiene importancia económica y es relativamente abundante en el occidente venezolano (9). Su madera se utiliza en mueblería, chapas decorativas, armadura de barcos, ebanistería, construcción y carpintería en general (5). Actualmente, según resolución Nº 217 de fecha 23/6/2006 del Ministerio del Poder Popular para el Ambiente de Venezuela, el pardillo negro se encuentra vedado debido a la sobreexplotación a la cual ha estado sometido por el alto valor comercial que tiene en el mercado nacional. Tomando en consideración que últimamente en los sistemas agroforestales nacionales se han venido incorporando especies arbóreas de reconocido valor comercial, particularmente para sombrear plantaciones de cacao y lechosa (8,14), el pardillo negro se incluyó en un estudio agroforestal localizado en El Vigía, Municipio Alberto Adriani del estado Mérida, cuyo propósito fundamental fue evaluar otras tres especies maderables: cedro (Cedrela odorata), caoba (Swietenia macrophylla) y apamate (Tabebuia rosea), más cuatro cultivares criollos de cacao comúnmente explotados en la región al sur del Lago de Maracaibo. Específicamente se registraran las tasas de crecimiento (1) y las respuestas fisiológicas del cacao y de las especies maderables. La investigación se inició en enero de 2007 y está siendo conducida por la Sección de Ecofisiología de Cultivos del Instituto de Investigaciones Agropecuarias de la Universidad de Los Andes. En abril de 2009, durante inspección fitosanitaria realizada al campo experimental antes citado, se encontraron árboles de pardillo muertos y totalmente defoliados (Fig. 1A). Al examinar detalladamente la porción basal de los árboles que aparentemente colapsaron de manera súbita, se observó que tanto las raíces como los tejidos del tronco estaban afectados por una enfermedad caracterizada por una pudrición negra (Fig. 1B-D). En virtud de la novedad del problema, se tomaron las muestras correspondientes para iniciar una investigación dirigida identificar el agente causal y su actividad patógena. MATERIALES Y MÉTODOS Aislamiento e identificación del patógeno. Los tejidos colectados fueron lavados durante una hora con agua corriente y posteriormente cortados en fragmentos que se procesaron de la siguiente manera: inmersión por 1 min en solución 0,5% de hipoclorito de sodio, lavado en tres cambios de agua destilada esterilizada (ADE), secado en papel absorbente esterilizado y siembra en placas que contenían medio de agua agar 2% acidificado con ácido láctico 50% (pH 4,5). Las placas se incubaron inmediatamente a temperatura ambiente (22 ± 2 ºC) y bajo un régimen de 12 h de luz fluorescente. La identificación se realizó siguiendo el protocolo de Summerell et al. (11) y la información contenida en el manual de Booth (4). Los aislamientos obtenidos fueron purificados en placas con papa-dextrosa agar (PDA) más antibiótico y posteriormente sub-cultivados en placas con PDA para determinar la tasa de crecimiento y la morfología de las colonias y en placas que contenían medio preparado con hojas de clavel y agar 2% (HCA), para registrar la forma y dimensiones de micro y macroconidios, estructura de los microconidióforos y la formación, disposición y tamaño de las clamidosporas (10). Se hizo especial énfasis en el origen de las microconidios. 2 Vol. 23, Nº 1, 2010